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조직 및 세포병리검사를 위한 검체 관리

조직 및 세포병리 검사

1) 조직 병리검체 취급방법

• 고정액은 10% 중성 포르말린으로 조직의 10-20배 정도의 양을 사용하여 조직이 완전히 담기게 하고, 실온에 고정합니다.
• 포르말린을 사용하는 목적은 검체 보존성이 뛰어나며, 조직의 자가융해(autolysis) 및 건조를 방지하기 위한 것입니다.
• 포르말린 이외의 생리식염수나 알코올 등은 절대 사용해서는 안됩니다.
• 고정액이 없는 경우, 생리식염수에 적신 거즈로 조직을 싸서 냉장 보관합니다. 최대한 빨리 고정액에 옮겨 담아야 합니다.
• 채취 부위가 다른 곳이라면 다른 용기에 담아 고정하십시오.
• 조직용기는 입구가 넓어야 하고, 고정액이 새지 않도록 밀봉해야 합니다.
• 검체별 고정 방법은 다음과 같습니다.
  • 큰 장기(예: 자궁, 유방 등): 장기의 절단면을 아래로 하여 넣고, 장기가 고정액에 충분히 잠기도록 하십시오.
  • 소화관(예: stomach) 등 점막 장기: 길이 방향으로 길게 절개하여 점막 부위를 노출시켜서 얇은 거즈로 잘싸서 고정하십시오.
  • 폐(lung): 기관지 말단으로부터 고정액을 주입하여, 가능한 고정액으로 팽팽히 채워 고정액이 조직 사이까지 골고루 침투되도록 하십시오
  • 생검조직(punch biopsy): 조직을 종이(예: 여과지)에 붙여서 포르말린에 담궈서 고정하십시오.
  • 조직이 작으므로 건조되지 않도록 주의하십시오.

2) 세포병리검사

세포검사용 검체

(1) 검체에 따른 고정방법

※ 주의사항

• 세포검사용 검체는 세포 변성을 방지하여 정확한 세포 관찰을 할 수 있도록 즉시 95% ethylalcohol 또는 cytospray 등 피복 고정제 (coating fixation)로 반드시 고정하십시오.
• 95% ethylalcohol로 고정하는 경우 적어도 1시간 이상 고정해야 합니다.

• 자궁경부(cervix), 내막(endometrium) 등
  • 검체는 한번에 많이 채취한 후 slide에 얇고 균일하게 도말하고, 즉시 고정하십시오.
  • cytobrush를 사용하여 채취하십시오.
  • 검체 채취 하루 전에 질내 치료나 피임약제 등의 사용을 금해 주십시오.
  • 검체 채취 전 외상 치료나 biopsy 등을 행하지 마십시오. 혈액의 RBC가 슬라이드에 도말되어 판독이 어려워집니다.
• 객담(sputum)
  • 아침 첫 객담을 받아 두 장의 slide 사이에 넣고 전, 후 좌우로 비벼 펼친 다음, 즉시 95% ethylalcohol에 고정하십시오.
  • 채취 시 타액이 섞이지 않도록 주의하고, 객담 자체를 의뢰할 경우 12-24시간 이내에 보내주십시오.
• 흉수액(pleural fluid), 복수액(ascitic fluid) 등 액체
  • 가능한 전량을 혼합하여 원심한 후 egg albumin을 침사에 첨가하여 slide에 도말하고, 즉시 95% ethylalcohol로 고정하십시오.
  • 도말이 불가능할 때 검체를 전부 냉장 보관하여 12-24시간 이내에 보내십시오.
• Urine, CSF 등 protein 양이 적은 검체
  • 원심분리기에서 1,500 rpm으로 10분간 원심하여 침전물을 slide에 도말한 후 고정하여 보내십시오.
  • 원심이 불가능할 경우 검체에 50% ethylalcohol을 검체의 양과 같은 양으로 혼합한 후 그대로 보내십시오.
• 천자액(aspiration biopsy)-유방, 갑상선, 림프액 등
  • 2-4장의 slide에 도말 후 PAP stain은 즉시 고정하고, Giemsa stain은 자연 건조 후 고정하십시오.
  • 검체량이 적은 경우 주사바늘과 주사통을 생리식염수로 세정하고 원심하여 침전물을 도말한 후 고정하십시오.
• pH가 낮은 검체-위액, 담즙 등
  • 검체는 얼음을 채운 후 box에 보관하고, 가능하면 수 분 이내에 원심하여 도말 slide를 만들어 고정하십시오.
  • 고정이 불가능할 경우 70% ethylalcohol을 검체의 1/3-1/4 정도의 양이 되도록 넣은 후, 얼음 box에 넣어 즉시 보내십시오.

참고사항

• 검체는 충분한 양을 채취해야 합니다.
• 채취된 검체는 도말 전까지 신선하게 보관하여야 합니다.
• 검체 용기에 환자의 이름, 번호, 의뢰처 등의 정보를 반드시 기재해야 합니다.
• 검체 채취 후 검체 용기의 마개를 단단히 막아 검체 유실을 방지해야 합니다

■ 액상세포검사 처리 방법 및 전용용기 안내

액상 세포검사
해당 검체: Cervix cell 자궁경(윤활유를 묻히지 마십시오)을 사용해 자궁경부의 cervix cell을 브러쉬(솔)로 채취 하십시오. 브러쉬(솔)를 보존액 용기에 넣어 2-3회 흔들어 주십시오. 브러쉬(솔)를 그대로 보존액 용기에 넣어 주십시오.
액상 FNA 검사
해당 검체: Thyroid, Lung, Pancreas, Lymphnode, Breast 그 밖에 aspiration 등 주사기를 이용하여 채취한 검체를 보존액에 넣어 주십시오. 검체는 최대 20mL 까지 용기에 넣을 수 있습니다. 잔여 검체는 주사기 그대로 같이 보내주십시오. 가능한 많은 양의 검체를 채취하여 주십시오. 검체량이 1mL 이하일 경우 주사기를 보존액 용기에 넣고 수 차례 pumping하여 최대한 많은 검체가 담겨질 수 있도록 합니다.
액상 Respiratory tract, body fluid 검사
해당 검체: Sputum, Body fluid(Bronchial washing, Ascitic fluid, Pleural fluid, Peritoneal fluid, Ovarian cyst, Urine 등) 침전물 검체 채취 전 반드시 양치질을 하여 구강 내 음식물로 인한 오염을 방지해 주십시오. 최대한 타액이 섞이지 않도록 주의해 주십시오. 횡경막에서 부터 나오는 깊은 기침을 하여 객담을 채취하십시오. Sputum은 최대 20mL 까지 보존액 용기에 채취하여 주십시오. 만약, 일반 용기에 채취하였다면 보존액 용기에 옮겨 담아 주십시오. * Sputum 외 검체의 경우 검체를 50mL 이상 채취하여 원심 후 침전물을 보존액 용기에 담아 보내주십시오.
액상 Urine 검사
해당 검체: Urine 첫 소변은 흘러 보내고 중간 소변을 채취하여 주십시오. 액상 Urine 용기에 검체를 100mL 이상 담아 주십시오.